1、实验动物通常是重约300 g的雄性大鼠。
2、该模型是通过腹腔内麻醉,5%戊巴比妥钠(50 mg/kg)制成的,并以仰卧位固定在手术台上。大鼠的顶点接触脉动*多的肋间空间,切开皮肤和肋间肌肉,挤压心脏,在肺动脉锥和左心耳的交界处找到前降支,并用距根部2 mm的丝线结扎,胸腔快速压迫肋骨直到动物恢复自发呼吸,缝合胸壁的肌肉和皮肤(提示:左冠状动脉起源于主动脉,并靠近肺窦的左端)它位于肺窦和左心耳之间,从头到尾成对角线2–3 mm,然后分叉,埋在心包膜下心肌中,通常不可见。然后,将丝线穿过肺窦,并将其从肺静脉连接到距肺动脉瓣2 mm的左心耳末端,穿过丝线的中心并缝合约5 mm的心肌以确保动脉。结扎应快速,以*大程度地减少心脏放置在胸部以外的时间
3.研究结果的评估
(1)心脏功能的评估:在连接多通道生理记录仪时,颈动脉插管可以记录心率,血压,左心室压力,等容收缩压差(dp/dt)。 ,小型动物可以提供特殊的超声设备来检测心脏功能,从而可以确保需要进行长期实验
(2)总体病理:通常为四唑蓝(TTC半定量评估梗死的心肌面积(用染色)。在处死动物之前,通过静脉插管注射0.5%的伊文思蓝溶液,正常心肌则染成蓝色并梗死。缺血心肌未染色,处死动物,迅速取出心脏,用滤纸吸收水,将其置于-20℃的冰箱中20分钟后取出,将左心室的纵轴调节至2-3mm。切成薄片,浸泡在2%TTC溶液中,在37°C水浴中孵育30分钟,缺血心肌被染成红砖,心肌梗塞未被染成,称重每个心肌切片,拍摄切片的图像,使用图像分析系统分析每个切片的颜色,将其表示为左心室总面积中梗塞面积的百分比,并获得所有切片的加权平均值。
(3)组织学:根据您的研究需要,选择免疫组化,免疫荧光和其他方法来检测目标物质。